Rhododendron obtusum (Lindl.) PLANCH

De origem oriental, mais especificamente da China, Coréia, Formosa, Himalaia e do Japão, onde podem ser vistas na forma de Bonsai até árvores de 4 m de altura. Espalhadas por todo mundo, esta espécie da família das Ericáceas a azaléia (Rhododendron obtusum Lindl.) PLANCH já conta com mais de 800 variedades divididas em dois grupos principais: as caducifolias e as perenifolias ou azaléias japonesas, possuem cores que vão desde o branco puro ao vermelho vivo, passando por muitos tons de rosa, salmon, lilás, roxo e ainda bicolores, foram muito modificadas pela hibridação surgindo um grande número de cultivares (BUENO, 1989).

A azaléia é uma espécie de folhas largas verdes e propagadas por estacas ou enxertia. A floração no jardim em clima ameno, ocorre na primavera, contudo pode-se forçar o florescimento em ambientes fechados durante qualquer estação do ano, em casa de vegetação por exemplo, através de técnicas de controle do fotoperíodo e temperatura apropriados. Requer temperatura diurna de 21º C e noturna mínima de 15ºC. A azaléia necessita cerca de 2 anos para obter uma planta com tamanho adequado para comercialização, quando propagada através de estacas apicais (Hartmann et al.1988).

As azaléias são propagadas sexuadamente por sementes e assexuadamente através da enxertia, mergulhia ou estaca apical. A propagação por sementes é utilizada para criação de novas variedades. Nos EUA a propagação vegetativa é largamente utilizada, pelo processo de enraizamento de estacas apicais. (Larson, 1980).

A propagação via sementes é realizada somente para programa de hibridação visando obter novas variedades. As sementes de muitas espécies podem ser adquiridas de plantas arbustivas, através da coleta em plantas adultas. As cápsulas são colhidas no verão. Quando secas se abrem mostrando os 5 lóculos que expulsam as sementes. Existem mais de 500 mil sementes por cápsula (Lee, 1965).

  As cápsulas das sementes coletadas após a queda dos frutos, quando apresentam coloração amarronzada, devem ser armazenadas a seco para que se abram. As sementes não apresentam problemas de dormência. Se desejar armazenar por período maior, deve-se baixar a temperatura do local de estocagem para 14ºC. As sementes germinam satisfatoriamente em substrato de esfagno ou vermiculita sobre uma mistura de areia e turfa ácida. Semear de modo usual em casa de vegetação com nebulização e manutenção de boa luminosidade durante o processo de germinação das sementes. A temperatura ótima para germinação é de 21ºC durante o dia e 13ºC durante a noite. A germinação geralmente ocorre dentro de 30 dias. O uso de água alcalina pode provocar injúria nas mudas (Hartmann et al. 1990).

  Pode ser utilizado como substrato o esfagno. Esse material absorve de 10 a 20 vezes o seu peso de água e lentamente a água vai sendo evaporada. O esfagno deve ser esterilizado para evitar o "damping-off". Utilizar um recipiente tipo bandeja de madeira, metal ou plástico. O metal e o plástico reduzem a contaminação por fungos, pois podem ser lavados e esterilizados após o uso. A fertilização não é necessária por algum tempo (LEE, 1965).

  Para propagação da azaléia torna-se necessário manter um programa de estoque de plantas vigorosas de onde se obtém as estacas para enraizamento. Essas plantas são mantidas em local sombreado ou em casa de vegetação.

Plantas matrizes cultivadas em vasos ou canteiros, podem ser fornecedoras de estacas apicais, quando estas apresentarem desenvolvimento satisfatório. Para manter estas plantas em condições saudáveis, torna-se necessário um programa de irrigação e fertilização das plantas.

A propagação de mudas não é feita apenas no verão. Quando as plantas matrizes são mantidas em condições ambientais protegidas, as mudas podem ser retiradas em qualquer época do ano.

Mudas ou estacas de aproximadamente 7 a 10 cm de comprimento são retiradas de plantas matrizes e tratadas com reguladores de crescimento que promovem e aceleram a formação de raízes. Um sistema de nebulização é ideal para propagação da azaléia, particularmente quando se possui um equipamento que mantém a temperatura próxima dos 25º C. O enraizamento ocorre de maneira geral dentro de 6 a 8 semanas, porém esse período vai depender da cultivar utilizada. A cultura de tecido até o momento não tem sido de impacto na propagação da azaléia.

Pode ser utilizado como substrato, a turfa ou produto similar, ou a mistura da turfa com perlita ou areia. O enraizamento difere de uma variedade para outra, porém quase sempre ocorre dentro de 6 a 8 semanas (LEE, 1965; Hartmann et al. 1988). Após 1 ano as mudas podem ser comercializadas em vasos de 10 cm de diâmetro.

A propagação da azaléia, segundo FERNANDES (1975), pode ser realizada por sementes, estacas, alporquia e enxertia. As estacas devem ser retiradas de ramos meio maduros, de modo que não sejam muito lenhosos nem muito herbáceo, deixando as folhas de ponteiros nas estacas. O estaqueamento deve ser realizado em estufa, utilizando como substrato, partes iguais de areia e turfa, e temperatura de 28º C e umidade relativa de 60-80%. Os melhores meses para o processo são novembro e dezembro. Geralmente necessita-se de 6 semanas para enraizar.

  SILVEIRA et al. (1987) estudaram o enraizamento de estacas de algumas cultivares comerciais de azaléia (A, B, C, e D por não se saber qual a variedade), foram colocadas para enraizar no campo em diferentes épocas do ano. Após 180 dias do plantio, retiraram-se as mudas do solo, para verificar o enraizamento. Constataram que pode-se produzir mudas de azaléia praticamente, durante o ano todo. Foram obtidos os seguintes resultados médios de enraizamento: para cultivar A 63,9% de estacas enraizadas; B 74,5%; C 75,6% e D 74,9%.

  #9; O efeito de regulador vegetal e época de estaqueamento em azaléia (Rhododendron simsii PLANCH), foi estudado por FERNANDES et al. (1977) utilizando estacas de 25 cm de comprimento (intermediário entre lenhosa e herbácea) foram inseridas em substrato contendo solo argiloso + esterco bovino (3:1). As estacas permaneceram 4 a 5 meses no substrato, sendo feita as avaliações no final de cada estação do ano. As estacas foram imersas em solução de Exuberone (4 g/l de ácido indolyl-3-4 butirico) em várias concentrações (5,10, 15, 20, 25 e 30 ml de Exuberone/l de água/ 24 horas). Concluíram que a melhor época foi no final de primavera, independente do uso do regulador. O efeito do Exuberone foi variável nas diferentes épocas e dentro de cada época. O tratamento no final de inverno foi o menos favorável, sugerindo estudos com doses mais elevadas do regulador.

  PEDROTTI et al. (1987) avaliaram o efeito do IBA (ácido indolbutírico) no enraizamento de estacas herbáceas de azaléia, testaram as concentrações de 0, 250, 500 e 1000 ppm plantadas em areia lavada sob sistema de nebulização intermitente. Foram testadas 5 tipos de estacas: T1: apical com seis folhas cortadas ao meio; T2: apical com seis folhas inteiras; T3: apical sem folhas; T4: sub-apical com 20 cm e três folhas: T5: sub-apical com 10 cm e três folhas. Decorridos 60 dias para o enraizamento verificaram que diferentes concentrações de IBA e os diferentes tipos de estacas apresentaram respostas diferenciadas quanto a produção de raízes. Concluíram que a melhor concentração de IBA foi a de 500 ppm para as estacas do tipo T1 e T2. Para diferentes concentrações, as estacas tratadas com 500 ppm de IBA apresentaram maior produção. O melhor tipo de estaca foi do tratamento T2.

  Trabalho desenvolvido por ECONOMOU & READ (1984) mostrou que as extremidades dos brotos de azaléia (Rhododendron sp.) multiplicam-se rapidamente quando cultivados em meio de cultura de Murashige & Skoog (MS) modificado pela redução da concentração de NH4NO3 e KNO3, adicionando-se (NH4)2SO4 (para dar uma relação de NH4+:NO3- de 1:1), retirando-se KI e substituindo-se Na2EDTA FeSO4 por Fe Na DPTA, os constituintes orgânicos são em mg/l: Tiamina -HCl 0,4; meso-inositol 100; sacarose 20.000; ágar 6000; N6- (delta2 - isopentenil) - adenina (2 iP), 5, 10 ou 20 sendo que o pH variou de 4 a 6, sendo 5,0 o mais efetivo. Uma média da taxa de multiplicação de 4 a 6 vezes mais para os diferentes clones foi alcançado depois de 10 semanas de cultivo neste meio de cultura. O meio foi renovado a cada semana, os brotos coletados poderiam ser enraizados no mesmo meio de cultura. O tecido que permaneceu nos tubos após a retirada dos brotos, quando recultivados em meio fresco, produziram 11-34 brotos para uma coleta adicional em intervalos de 6 semanas. A adição de 1 mg/l de ácido indolacético (AIA) ao meio, aumentou o número e a qualidade dos brotos.

Saintpaulia ionantha wendl.

A violeta africana (Saintpaulia ionantha wendl.) é uma espécie florífera perene da família Gesneriaceae, que engloba 125 gêneros e mais de 2.000 espécies conhecidas. Destas, aproximadamente 300 têm sido cultivadas.

O seu nome (Saintpaulia ), foi dado por Hermann Wendlan, botânico alemão, em homenagem ao seu descobridor, Barão Walter Van SaintPaul, governador da German East África, que as encontrou nas montanhas da província de Usambra, em Tanga, no leste da África na antiga colônia Africa Oriental alemã, em 1892 (KRACKOWIZER, 1956; KIMMINS, 1980).

Para obtenção de novas cultivares, devemos lançar mão do processo de propagação via sementes que é um método muito eficiente.

Inicialmente obtêm-se as sementes através de polinização artificial das flores. Nas nossas condições, a frutificação natural é muito rara.

O primeiro passo é a escolha das duas cultivares com características desejáveis. Identificar os progenitores femininos e masculinos, ou seja, a planta-mãe receptora e a planta doadora dos grãos-de-pólen respectivamente.

Assim que a flor se abrir, deve-se retirar as anteras da planta marcada como planta-mãe, por medida de segurança. Utilizar uma pinça de ponta fina. Aguardar até que as pétalas estejam totalmente abertas, época em que o estigma estará receptivo. Retirar algumas anteras do progenitor masculino utilizando uma pinça sobre um papel, faz-se a polinização colocando os grãos-de-pólen sobre o estigma por meio de um pincel fino e macio. Identificar a planta-mãe pelo número ou nome (se conhecida a cultivar) e a data do cruzamento, não esquecendo também da cultivar doadora do pólen.

Rector (1956) citado por TOMBOLATO et al. (1993) considera como melhor momento para polinização, a metade do dia, quando o ar está mais quente.

Na segunda semana após a polinização pode-se notar uma turgescência no ovário, é o sinal que houve sucesso no processo.

Para propagação da violeta, as plantas matrizes deverão ser mantidos em local protegido, dentro de estufas ou túnel plástico, o matrizeiro. As plantas são mantidas por nove semanas no local, devendo cada uma fornecer de 3 a 5 folhas por vaso e por semana. As folhas devem estar livre de pragas e doenças e bem desenvolvidas, retirando as folhas mais externas. Portanto, efetuam-se quatro coletas de folhas, a primeira logo após a seleção das matrizes e as próximas a cada semana, por 3 semanas consecutivas. Após a última coleta, deve-se descartar essas plantas, renovando o plantel com plantas destinadas a produção de flores, escolhendo as melhores (TOMBOLATO et al. 1993)..

A estaquia é tradicionalmente o método mais usual, pela facilidade de realização e enraizamento das folhas. É iniciado pela retirada do limbo foliar de plantas matrizes em boas condições de sanidade e desenvolvimento, conservadas em estufa ou túnel plástico.

O limbo deverá vir com uma fração do pecíolo de 1,0 a 2,0 cm de comprimento. Tamanho maior atrasa a formação de mudas. Alguns produtores eliminam o pecíolo totalmente, sem perda na eficiência de brotação. O tamanho da folha utilizada como estaca não necessita ser totalmente desenvolvida, quando o limbo atingir 5 cm de comprimento, pode ser colhida para enraizamento.

Pode-se utilizar como substrato, palha de arroz carbonizada, pó de xaxim ou vermiculita de textura grossa, puros ou combinados entre-si, todos devem ser esterilizados para evitar problemas de doenças. As folhas devem ser fixadas no substrato sem tocar uma nas outras, devendo receber boa luminosidade. Os produtores, geralmente, enterram apenas o pecíolo, deixando as folhas ligeiramente inclinadas (45º) ou, quando sem pecíolo, na posição horizontal.

A temperatura ambiente ideal para enraizamento da violeta africana é de 21ºC. Após o plantio das folhas, entre 8 a 12 semanas, dependendo da época do ano, pode-se fazer o transplante das mudas para recipientes individuais.

A propagação da violeta africana in vitro pode ser realizada com sucesso utilizando explantes do limbo foliar, pecíolos, pétalas e anteras. Contudo um método simples e prático consta do uso de limbo e pecíolo previamente lavados em água corrente.

A qualidade da muda produzida in vitro é muito superior à propagação tradicional. Enquanto na forma tradicional podemos obter 4 mudas a partir de uma folha num período de 5 meses, na cultura de tecidos está em torno de 200 mudas, para qualquer cultivar.

O primeiro passo é a esterilização superficial das folhas com álcool a 70% por 5 segundos, depois em hipoclorito de cálcio 1% + Tween 20 (2 a 3 gotas), por 10 minutos e lavagem quatro vezes em água destilada autoclavada.

Esse meio induz a regeneração dos explantes que inicia pela brotação. Após 4 semanas transferir os explantes para outro meio composto de 1/2 MS + 6-benzilaminopurina (6-BA) 0,5 mg/l, onde ocorrerá a formação de múltiplas brotações dentro de 3 a 4 semanas. O pH dos meios, deverá ser de 5,7. Os frascos utilizados foram cobertos com papel alumínio, em câmara clara, a 25ºC com 16 horas de luz (fotoperíodo longo).

Obtido as brotações que se desenvolveram para formar novas mudas, estas deverão ser divididas e transferidas para estufa em bandejas com pó de xaxim e vermiculita (1:1), umedecida com solução de adubo foliar NPK: 07-06-19, 1 g/l. Cobrir, as bandejas com polietileno transparente.

Após duas semanas retirar a cobertura para aclimatar as mudas sob umidade decrescente por mais 4 semanas. Nesta fase as mudas já podem ser levadas para copos plásticos, de 6 cm de diâmetro e 6 cm de altura, ou bandejas coletivas, uma vez que já se encontram com as folhas expandidas e totalmente enraizadas. É desejável a adição de fertilizantes, principalmente o fósforo em pequena concentração na forma solúvel. O substrato pode ser o mesmo utilizado no transplante definitivo. Essa fase leva cerca de 2 a 3 meses dependendo das condições ambientais, pois no inverno o desenvolvimento é mais lento.

Quando as mudas apresentarem mudanças como: encurtamento do pecíolo, expansão do limbo e início de formação de botões florais é sinal que deve-se proceder o transplante para vasos definitivos de 12 cm de diâmetro. Todo esse processo deve ser realizado em ambiente fechado. Observar, a qualidade do substrato e o método de irrigação.

TOMBALATO et al. (1987) testaram 5 tipos de materiais puros, pó de xaxim, palha de arroz carbonizada, sílica, vermiculita fina e vermiculita grossa, testaram também 5 substratos compostos de pó de xaxim+sílica, vermiculita fina+ sílica, vermiculita+palha de arroz carbonizada, vermiculita grossa+pó de xaxim e palha de arroz carbonizada+areia grossa de barranco, sendo o último tratamento utilizado pelos produtores de violeta. O melhor substrato foi o pó de xaxim e em seguida os substratos mais leves, como as vermiculitas grossa e fina, palha de arroz carbonizada e suas misturas. A sílica se mostrou ineficiente na formação de mudas. o desenvolvimento foi maior na vermiculita grossa e depois na vermiculita fina.

Os mesmos autores avaliaram 7 tipos de explante de folha para formação de mudas de violeta africana, utilizou o substrato constituído de uma mistura de areia grossa de barranco e palha de arroz carbonizada (1:1). Verificaram que pecíolos plantados sem limbo morreram rapidamente, assim como limbo sem pecíolo que apresentou 50% de mortalidade devido principalmente a prodridões causadas por fungos, sendo elevado o número de mudas por explante. Relataram ainda, que o tamanho do limbo possui influência direta na formação de novas plantas, sem o mesmo a produção cai pela metade. O tamanho do pecíolo não exerceu influência aparente na propagação.

  TAKEBAYASHI (1987) testou variedades de violeta africana visando a propagação através de cultura de tecidos. Observou o tempo necessário para produção de novas plantas e a quantidade e qualidade das mudas obtidas.

Utilizou tecido de folhas e pecíolo, previamente esterilizados com uma solução de hipoclorito de sódio a 1% e Tween 80 a 0,1% por cinco minutos em imersão. Os meios utilizados foram o MS ( Murashige & Skoog ) + cinetina 0,2 mg/l e ácido naftalenacético (ANA) 0,2 mg/l - meio para indução à regeneração. Utilizou MS (1/2 da concentração) + ácido indolbutírico (IBA) 0,5 mg/l e para o enraizamento utilizou o MS + ANA 0,1 mg/l e IBA 0,2 mg/l.

Após a obtenção do enraizamento as novas mudas foram transplantadas para substrato composto por vermiculita expandida umedecida com solução de Hypomex 1 g/l e mantidas em casa de vegetação durante 30 dias, sendo transferidas para substrato definitivo.

Concluiu que através da cultura de tecidos utilizando apenas 5 folhas pode-se obter após 5 meses, aproximadamente 1.000 mudas. Pelo método comercial a proporção seria de 20 mudas para 5 folhas.

Kalanchoe blossfeldiana Poelln. - Crassulaceae

Nativa do madagascar, planta suculenta que requer alta intensidade de luz (50.000 lux), e necessita de dias curtos -12 horas e temperatura noturna de 17ºC para rápido florescimento. Um período de 6 semanas consecutivas de fotoperíodo (dia curto = DC) é necessário para o florescimento com temperatura de 17ºC. São necessárias 14 semanas a 13ºC para florescer. Novas cultivares e híbridas são propagadas por estaca terminal, porém são obtidos de viveiros de plantas jovens em vaso. Plantas matrizes são mantidas sob dias longos (DL), como ocorre com o crisântemo. Para propagação via sementes, a temperatura ótima para germinação (10 dias) sob luz, é de 21ºC com adequado substrato. As pequenas sementes são semeadas na superfície do solo sob local protegido. O tempo para propagação é de 14 a 21 dias quando realizada por estaquia terminal. Plantas jovens são mantidas sob alta intensidade de luz, sob condições de dias longos (Hartmann et al. 1988).

  Inicialmente a propagação por sementes foi o melhor método para propagação do kalanchoe a nível comercial. Na Europa já se propagava o Kalanchoe blossfeldiana via sementes. Em 1932 na Alemanha, inúmeros híbridos de kalanchoe foram introduzidos para produção comercial. As sementes de Kalanchoe são extremamente pequenas possuindo 2,5 milhões de sementes em 28 gramas. Nos EUA as sementes são semeadas de janeiro a julho (Hartmann et al. 1988).

SCHWABE (1985), cita que o kalanchoe pode ser propagado por sementes, as quais são bastante pequena, requerendo luz para germinação. A germinação corre após 1 semana ou 10 dias com temperatura ao redor de 25ºC.

LAURIE & KIPLINGER (1948), cita que as sementes de kalanchoe germinam entre 10 e 14 dias, quando semeadas entre janeiro a julho (EUA).

Para produção de flor de vaso, utilizado por produtores da grande São Paulo, a estaquia apical constitui o método mais usual entre os produtores. As estacas são colocadas para enraizar em caixas coletivas ou vasos individuais com 100 ml de capacidade, em substrato de sub-solo argiloso ou arenoso de acordo com a disponibilidade do produtor. O enraizamento ocorre com 3 a 4 semanas, daí é transplantada para o vaso definitivo, em substrato de fibra de xaxim (Dicksonia sellowiana Presl.), colocando uma ou mais mudas/vaso, dependendo do diâmetro do vaso elimina-se a parte apical, para que haja brotação lateral. A muda é submetida por um mês a tratamento de dias longos, com mais de 12 horas de exposição a luz, independente do fato de ser luz solar ou artificial. Após isso é submetida ao tratamento com dias curtos, com o uso de lençóis ou polietileno preto. Aguarda-se o florescimento para comercialização.

Entre a obtenção da estaca e a planta pronta para venda decorrem de 105 a 120 dias.

As matrizes são mantidas pelos produtores, cultivadas em vasos de onde retiram o material para propagação. As plantas de kalanchoe formam antocianinas quando submetidas a tratamentos com dias curtos, as folhas apresentam-se com os bordos e a parte dorsal uma coloração com cor castanha (Neyland et al. 1963 citado por GONÇALVES, 1992).

As plantas matrizes são mantidas sempre em condições de dias longos, não produzem antocianina, possuindo as folhas verdes. Quanto aos substratos para propagação vegetativa, GONÇALVES (1992) obteve ótimos resultados quando utilizou vermiculita + torta de filtro Oliver (resíduos obtidos da fabricação do açúcar), na proporção de 3:1 em volume.

  Estoque de plantas matrizes são mantidas em áreas isoladas em ambiente com ótimo controle das condições ambientais. Plantas com 6 cm, em vaso, são adquiridas de produtores especializados.

Duas semanas após o estabelecimento das plantas em local adequado, remover aproximadamente 1 cm do ápice das plantas no sentido de aumentar a brotação lateral. As plantas matrizes são cultivadas em vaso firme por algumas semanas e espaçadas 28 cm uma das outras. É importante providenciar uma boa circulação do ar no sentido de minimizar o aparecimento de doenças foliares. É bom lembrar que o espaçamento pode ser aumentado no caso de plantas velhas.

As plantas são mantidas em dias longos constantemente para crescimento vegetativo. Durante a noite as luzes podem ser ligadas (161 lux) por um período que varia de 2 a 4 horas dependendo da época do ano, ou seja no verão menor tempo e no inverno maior tempo. São necessárias 16 horas ou mais de luz diária para manutenção do estágio vegetativo das plantas. A temperatura ótima é de 18ºC.

Estacas são constantemente retiradas das plantas matrizes. A aquisição de mudas para produção de flores, de viveiristas especializados (terceiros), evita a manutenção de plantas matrizes na propriedade.

Quando se deseja produzir as próprias mudas para produção de flores, deve-se retirar estacas terminais com 5 a 7,5 cm de comprimento, este é um tamanho adequado para o enraizamento. São necessários somente 2 pares de folhas .

O substrato para enraizamento pode ser: areia, turfa e areia, solo e musgo e agregados grosso. As estacas podem ser enraizadas em containers de madeira ou plástico. O espaçamento recomendado depende das cultivares utilizadas. As folhas devem ser inseridas no meio de cultivo a uma profundidade de 2,5 a 4 cm.

Um excelente enraizamento consegue-se com uma estrutura que possua um sistema de nebulização intermitente que deverá ser ligado por um período de 6 segundos a cada 6 a 10 minutos durante o dia. Durante as horas mais quentes do dia, quando aumenta a intensidade de luz, esse tempo pode ser alterado para 6 segundos a cada 3 a 5 minutos. Após a formação de calus nas estacas, o que deverá acontecer por volta de 7 dias, a freqüência de nebulização fica na faixa de 6 a 10 minutos.

O sucesso do processo de produção de mudas através da estaquia de folhas depende, também, do fator temperatura e ar. A temperatura da noite deve ficar entre 16,5 a 18ºC e durante o dia 21 a 24ºC, sendo 21ºC a temperatura ideal. O controle da temperatura é realizado através da instalação no interior da estufa de equipamentos que aquecem o ambiente, controlados por meio de um termostato.

  As begônias já eram conhecidas desde o século XVII pelos chineses. O nome do gênero foi dado em pelo Botânico francês Charles Plumier em 1690, em homenagem ao seu descobridor Michel Begon, governador de São Domingos, antiga ilha de Hispaniola, hoje Haiti. Atualmente já se catalogou mais de 800 espécies e milhares de híbridos. As begônias cultivadas atualmente são provenientes de cruzamentos iniciados no século XIX, surgindo cultivares com diversas características, como florescimento contínuo, maior resistência a baixa e alta temperatura e inúmeros formatos e cores de flores (Winters, 1993).

São classificadas em grupos distintos que levam em conta o seu sistema de propagação: as begônias rizomatosas, tuberosas (tuberhybrida), sempre floridas e as arbustivas (LARSON, 1980; KRAUSS, 1947). Desses grupos, existem àqueles que o interesse pelo cultivo é pela beleza de suas folhagens (begônia rex), pelas folhas e flores (begônia sempre florida) e pelas flores com tamanho, formato e cores variadas (begônia tuberhybrida).

Com a introdução das espécies Begonia bolivienses, B. rosaeflora, B. veitchi, B. pearcei e B. clarkei, sendo cruzadas com outras espécies, originou plantas com flores isoladas de tamanho grande e muito ornamentais chamadas de Begonia tuberhybrida (KRAUSS, 1947).

  Nesse trabalho, descreveremos apenas o grupo das produtoras de flores, que são cultivadas como flor de vaso, às tuberosas.

As begônias tuberosas são encontradas na Ásia, África até a Cordilheira dos Andes de 2 a 4 mil metros de altitude. Produzem flores simples, semi-dobradas e plenamente dobradas de tamanho grande parecidas com as camélias, cravos e rosas. Existem dentro desse grupo àquelas que possuem uma haste ramificada e àquelas desprovidas desta haste, cujas folhas saem diretamente do tubérculo, formando assim 2 subgrupos. A Begonia davisii e B. rosaeflora emitem hastes e B. boliviensis e B. fulgens representa aquelas que não emitem hastes.

As begônias tuberhybridas podem ser propagadas através dos tubérculos, erroneamente chamado de bulbo, que devem ser retirados do solo quando as folhas iniciarem o processo de senescência. Conservar as túberas em local fresco e limpo até o momento do plantio. Os tubérculos podem ser cortados em 2, 3 ou 4 partes, de acordo o número de gemas que estão localizadas na parte superior dos tubérculos. Cada parte cortada deve possuir uma gema que brotará originando uma nova planta, o plantio é feito em vasos individualizados.

As sementes de Begônia são muito pequenas, porém sua longevidade é bastante grande. Sementes de begônia tuberosa ficam viáveis por 9 anos, contudo as sementes devem ser semeadas até 1 ano após colhidas. Elas requerem um período de 1 mês para sua maturação (LARSON, 1980).

CASTRO & GONÇALVES (1992) relataram que os tubérculos podem ser plantados no início de sua brotação. Após a floração as folhas secam e caem é o momento de retirar os propágulos do solo e tratá-los com fungicidas. Deixar em repouso em locais sombreados, secos e com boa ventilação até iniciar a brotação. A armazenagem pode ser feita em esfagno seco. O florescimento ocorre na primavera.

A begônia tuberosa de flor grande, Begonia tuberhybrida da família Begoniaceae, é encontrada com flores de cor branco, rosa, vermelho, alaranjado e bicolor. A floração ocorre de dezembro a março sendo a primeira florada aos 4 meses. Sua propagação pode ser realizada através de tubérculos e estaquia de folhas que neste caso deverá vir com pequeno fragmento do pecíolo. Fazer cortes no limbo foliar nas nervuras. Plantar em caixas preenchidas com areia ou vermiculita umedecida. As folhas não devem ser enterradas.

A begônia pode ser propagada através da cultura de tecidos, IIDA et al. (1986) trabalharam com segmentos de folhas de begônia no tamanho de 7x7 mm2 em meio de Murashige & Skoog (MS) contendo 1 mg/l de BA e 1 mg/l de ANA, o material ficou neste meio por 70 dias. Após o enraizamento e brotações, foram transferidas para o meio MS (metade da concentração) + 1 mg/l de ANA e após 30 dias, foram transferidas para o solo. Os segmentos de folha permaneceram, após brotações, no meio, podendo ser usadas para produção de mais brotações em 40 dias (em meio MS + 10 mg/l de BA + 1 mg/l de ANA). Segundo os mesmos autores, teoricamente, um quadrado de 7 x 7 mm de segmento foliar pode-se obter 105 plântulas em 1 ano.